- Base
- Preparação
- - Preparação caseira (não comercial) de ágar batata dextrose
- Placas de petri
- Cunhas
- - Preparação comercial de ágar batata dextrose
- Formulários
- Processo para semear amostras de plantas em ágar batata dextrose
- -Para folhas manchadas
- -Para frutas e tubérculos
- -Para grãos
- -Para ramos e caules
- Processo para semear amostras de pele, cabelo ou escama de unha em ágar batata dextrose
- - Amostra de pele
- - Amostra de cabelo
- - Amostra de unha
- Procedimento de identificação
- Contagem de colonias
- Manutenção de cepas de fungos
- Controle de qualidade
- Referências
O ágar batata dextrose é um meio de cultura de nutrientes sólidos não seletivos. Nele podem crescer espécies bacterianas e fúngicas, mas seu uso é especialmente indicado para o isolamento de fungos filamentosos e leveduras. É também conhecido como meio PDA para a expressão inglesa Potato Dextrose Agar.
É particularmente útil para o isolamento de fungos fitopatogênicos, ou seja, aqueles que afetam as plantas. Para semear as amostras de vegetais infectados, outros meios, como ágar Sabouraud ou ágar malta podem ser usados, no entanto, para uso rotineiro, ágar batata dextrose é preferido devido à obtenção de maior esporulação.
Aspergillus niger e Sinemas em ágar batata dextrose, respectivamente. Fonte: Alextrevelian 006 na Wikipedia / Joselrojas em inglês
Também é usado para a contagem de colônias de fungos em amostras de cosméticos, produtos farmacêuticos e alguns alimentos lácteos. Da mesma forma, é adequado para semear amostras de raspados de pele em busca de dermatófitos, que crescem muito bem neste meio, desenvolvendo seus pigmentos característicos.
O meio de dextrose de batata é um meio muito simples e fácil de preparar em laboratório. Contém, como o próprio nome indica, infusão de batata, dextrose e ágar-ágar. Além disso, substâncias inibidoras podem ser adicionadas para prevenir o crescimento bacteriano e aumentar a seletividade para espécies de fungos.
Base
O ágar batata dextrose é um meio de cultura que fornece os elementos nutricionais necessários para o desenvolvimento de fungos filamentosos e leveduras.
A combinação da infusão de batata com glicose fornece a fonte de energia perfeita para um crescimento satisfatório de fungos. Já o ágar é quem dá consistência ao meio.
O meio sozinho não inibe o crescimento de bactérias, portanto, é um meio não seletivo. Para torná-lo seletivo, é necessário a adição de substâncias inibidoras, como ácido tartárico ou antibióticos.
Preparação
- Preparação caseira (não comercial) de ágar batata dextrose
Placas de petri
É preparado da seguinte forma:
Em primeiro lugar, as batatas são muito bem lavadas, retirando o solo que possuem. Eles são cortados em fatias finas com tudo e casca. 200 gramas de batatas são pesadas e fervidas em um litro de água destilada por meia hora.
No final, filtre ou coe todo o preparado com uma gaze.
O líquido obtido é completado com água destilada até um litro. 20 g de ágar-ágar e 20 g de dextrose são adicionados à infusão, bem misturados e autoclavados a 121 ° C, a 15 libras de pressão por 15 minutos.
Deixe esfriar a 50 ° C e sirva em placas de Petri estéreis. Os pratos preparados são armazenados no refrigerador.
Cunhas
Também podem ser preparadas fatias de ágar de dextrose de batata.
Neste caso, antes de esterilizar na autoclave, 12 a 15 ml do meio são colocados em tubos, posteriormente são autoclavados e ao deixarem deitarem em suportes especiais até solidificar. Guarde na geladeira.
O meio permanece com pH de 5,6 ± 0,2, porém alguns laboratórios adicionam ácido tartárico a 10% para baixar o pH para 3,1 ± 0,1 a fim de inibir o crescimento bacteriano.
Nesse mesmo sentido, outros laboratórios preferem adicionar antibióticos para torná-lo seletivo para o cultivo de fungos e prevenir o crescimento bacteriano.
- Preparação comercial de ágar batata dextrose
Pesar 39 g do meio desidratado comercialmente disponível e dissolver em um litro de água destilada. Deixe descansar por 5 minutos.
A mistura é aquecida com agitação frequente até estar completamente dissolvida. Posteriormente, é esterilizado em autoclave a 121 ° C por 15 minutos.
Pratos ou fatias podem ser preparados. Proceda conforme descrito acima.
O pH permanece em 5,6 ± 0,2. Se desejar um pH de 3,1, deve-se adicionar 14 ml de ácido tartárico estéril a 20% antes de servir nos pratos.
O meio bruto é bege e o meio preparado é âmbar claro com uma aparência ligeiramente turva ou opalescente.
Formulários
Processo para semear amostras de plantas em ágar batata dextrose
-Para folhas manchadas
As folhas são cortadas em pedaços.
Em um copo de 50 cc com álcool 50%, coloque os pedaços das folhas (pedaços manchados e saudáveis), para desinfetar a superfície por 20 a 30 segundos. Jogue fora o álcool e adicione hipoclorito de sódio a 20% por 40 a 50 segundos se forem folhas finas e aumente o tempo para 80 segundos se for casca e toros.
Descarte o hipoclorito de sódio e retire as peças desinfetadas com pinça estéril e coloque-as sobre a superfície do meio (máximo de 10 peças). Defina a data e incube a 20-30 ° C.
-Para frutas e tubérculos
Se a fruta for carnuda, abra a fruta afetada pelo fungo e pegue pedaços com um bisturi esterilizado das partes doentes e sãs e coloque-os na superfície do ágar.
Se a fruta for cítrica, como um limão ou uma laranja, ela deve ser aberta e suas sementes plantadas.
Quando a superfície da fruta é afetada e esporos são observados, o ideal é usar o método de ralar no prato; Consiste em tocar os esporos com uma espátula esterilizada e resfriada em forma de “L” e, em seguida, semear em zigue-zague 2 a 3 vezes no ágar.
-Para grãos
Eles são desinfetados conforme descrito nas folhas e posteriormente colocados no ágar.
-Para ramos e caules
A casca é raspada e, posteriormente, pedaços da parte sadia e doente são retirados e semeados diretamente no ágar.
As placas semeadas são incubadas aerobicamente a 20-30 ° C durante 72 horas.
Processo para semear amostras de pele, cabelo ou escama de unha em ágar batata dextrose
A coleta deve ser feita com lâmina de bisturi nº 11, seja para cortar cabelos afetados, escamas de pele ou unhas em busca de dermatófitos. Antes da coleta da amostra, a área deve ser desinfetada com álcool 70%.
- Amostra de pele
Em lesões escamosas, a borda da lesão deve ser raspada, pois o fungo é mais provável de ser encontrado ali.
Nas lesões exsudativas, a amostra é coletada com um cotonete seco ou úmido. Semeie imediatamente em ágar batata dextrose ou ágar Sabouraud. Evite meios de transporte.
Outro método de amostragem é através da técnica do tapete quadrado de Mariat e Adan Campos. Nesse caso, a área afetada é friccionada 5 vezes com um pedaço de lã esterilizada para posterior cultivo.
A amostra pode ser colocada diretamente no meio de cultura.
- Amostra de cabelo
Dependendo da patologia, a parte afetada pode ser cortada ou arrancada. Coloque a amostra no meio de cultura.
- Amostra de unha
Uma parte específica da unha afetada pode ser raspada ou cortada. Dependerá do tipo de lesão.
Cortar a amostra em pedaços de 1 mm antes da semeadura para aumentar a probabilidade de contato do fungo com o meio de cultura.
Procedimento de identificação
As colônias obtidas na placa são isoladas em tubos contendo ágar batata dextrose para a realização do estudo macroscópico das colônias (aspecto, cor, consistência, grau de desenvolvimento.
O estudo microscópico (observação das estruturas e suas formações) pode ser feito por microculturas ou observação direta ao microscópio entre a lâmina e a lâmina.
Contagem de colonias
Este meio também pode ser usado para determinar a carga de fungos e leveduras presentes em amostras de plantas, alimentos, cosméticos ou medicamentos. Para tanto, utiliza-se ágar batata dextrose suplementado com antibióticos, como: (cloranfenicol, clorotetraciclina ou ambos).
Despeje 1 ml da amostra - de preferência diluída - em uma placa de Petri estéril e vazia, derreta um bloco de ágar batata dextrose e deixe esfriar a 45 ° C. Despeje na placa de Petri e gire até homogeneizar. Deixe descansar até que se solidifique.
Incubar aerobicamente a 20-25 ° C (bolores) ou 30-32 ° C (leveduras) por 5 a 7 dias ou mais, dependendo do tipo de fungo procurado e do tipo de amostra. Duas placas podem ser usadas para incubar em ambas as faixas de temperatura.
Contagem de colônias de fungos em uma amostra de alimento. Agar de dextrose de batata suplementado com antibióticos. Fonte: foto Pxhere.com / 777267
Manutenção de cepas de fungos
O Ágar Dextrose Batata pode ser usado para manter cepas fúngicas viáveis por vários anos.
Para isso, o fungo é cultivado em fatias de ágar batata dextrose e, uma vez que o fungo cresceu, é coberto com óleo mineral. O óleo deve ser esterilizado em autoclave por 45 minutos, e ter viscosidade de aproximadamente 300 a 330 Saybolt. O óleo deve estar 1 a 2 cm acima da ponta do bisel.
Controle de qualidade
De cada lote preparado, pegue 1 ou 2 placas e incube-as a 25 ° C por 48 horas ou a 20 ° C por 96 horas. Um bom controle de esterilidade é aquele em que não se observa o desenvolvimento de colônias.
Cepas de controle conhecidas ou certificadas também podem ser usadas, tais como:
Saccharomyces cerevisiae ATCC 9763, Candida albicans ATCC 10231, Aspergillus brasiliensis ATCC 16404, Trichophyton mentagrophytes ATCC 9533. Espera-se um bom crescimento em todos os casos.
Referências
- Britannia Laboratories. Batata de ágar de glicose. 2015. Disponível em: britanialab.com
- Neogen Laboratories. Agar de Dextrose de Batata. Disponível em: foodsafety.neogen.com
- Laboratório Insumolab. Agar de dextrose de batata. Disponível em: insumolab.cl
- Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. (2009). Bailey & Scott Microbiological Diagnosis. 12 ed. Editorial Panamericana SA Argentina.
- Casas-Rincón G. Micologia Geral. 1994. 2ª Ed. Universidade Central da Venezuela, Edições da Biblioteca. Venezuela Caracas.
- Aceituno M. Avaliação da Qualidade Microbiológica em Sombra, Tipo Pó Compacto de um Laboratório Nacional de Produção, de acordo com o Método de Referência Pharmacopea Usp 2005. Tese para qualificação para o título de Químico Farmacêutico. Universidade de San Carlos da Guatemala.
- Cuétara M. Processamento de amostras de superfície. Iberoamerican Journal of Mycology. 2007; pp. 1-12