- Corantes usados em coloração simples
- Os 6 passos para uma coloração simples
- Passo 1
- Observação
- Passo 2
- Observação
- etapa 3
- Passo 4
- Observação
- Etapa 5
- Referências
A coloração única é um procedimento de coloração rápido e simples em que se utiliza um único corante, por isso é denominado simples. É usado principalmente para determinar a morfologia e a organização das células presentes em uma amostra.
As células são naturalmente incolores, por isso é necessário torná-las visíveis de alguma forma quando vistas ao microscópio.
Células da bochecha humana coradas por coloração simples com azul de metileno.
É importante ressaltar que os corantes utilizados na coloração simples devem ser básicos com carga positiva (catiônica), para que possam se ligar espontaneamente à parede celular e ao citoplasma.
Essas estruturas celulares são carregadas negativamente. É por isso que o corante carregado positivamente é atraído pelas células e se liga espontaneamente a elas. Assim, todas as células presentes em uma amostra são rapidamente coradas.
Corantes usados em coloração simples
Existem vários corantes básicos que podem ser usados no laboratório de microbiologia. Os mais usados são:
- Azul de metileno.
- Violeta de cristal.
- Verde malaquita.
- Fucsina básica.
Todos esses corantes funcionam bem em bactérias porque têm íons coloridos (cromóforos) carregados positivamente (catiônicos).
Os tempos de coloração para a maioria dessas manchas são relativamente curtos. Geralmente variam de 30 segundos a 2 minutos, dependendo da afinidade do corante.
É importante lembrar que antes de tingir uma amostra por coloração simples, ela deve ser estendida e fixada na lâmina de vidro (lâmina); a amostra estendida e fixa é chamada de esfregaço.
Os 6 passos para uma coloração simples
Passo 1
Coloque a lâmina em uma prateleira de coloração e aplique a tinta desejada. Deixe o tempo correspondente agir.
A coloração simples normalmente leva de alguns segundos a alguns minutos, dependendo da coloração usada.
Observação
Nesta etapa é importante não ultrapassar o tempo recomendado para o corante utilizado, uma vez que podem se formar cristais na folha, produzindo os chamados "artefatos" que distorcem a morfologia das células.
Passo 2
Lave bem o esfregaço da lâmina com água destilada de uma garrafa ou também água corrente da torneira, até que o escoamento fique claro. Isso geralmente leva de 5 a 10 segundos.
Observação
Não aplique o jato d'água diretamente sobre o esfregaço, para evitar que a força do mesmo prejudique a amostra.
Se você não tiver água destilada, pode usar água da torneira sem problemas, pois não afetará o resultado da coloração.
etapa 3
Seque a lâmina com toalhas de papel absorventes em uma direção e sem esfregar. Certifique-se de que a parte inferior da lâmina esteja limpa.
Passo 4
Observe o esfregaço manchado ao microscópio. Comece com os objetivos mais distantes para localizar adequadamente a área que você deseja observar com mais detalhes. Mude o objetivo para ficar cada vez mais perto da amostra.
Observação
Para a utilização da objetiva com maior aumento (normalmente 100X), deve-se usar óleo de imersão, pois ajuda a luz a penetrar melhor e a imagem mais nítida. Não é necessário usar uma lamela.
Etapa 5
Finalmente, descarte todas as amostras em um recipiente apropriado, devidamente rotulado como "risco biológico".
Referências
- (2001). Aplicações microbiológicos: A Laboratory Manual, em General Microbiology (8 th ed.). As empresas McGraw-Hill.
- Harisha, S. (2006). Uma Introdução à Biotecnologia Prática (1 st). Firewall Media.
- Moyes, RB, Reynolds, J., & Breakwell, DP (2009). Coloração preliminar de bactérias: Manchas simples. Current Protocols in Microbiology, (SUPPL. 15), 1–5.
- Pommerville, J. (2013). Fundamentos da Alcamo de Laboratório de Microbiologia (10 th). Jones e Bartlett Learning.
- Prescott, H. (2002). Exercícios Laboratoriais de Microbiologia (5º). As empresas McGraw-Hill.
- Sumbali, G. & Mehrotra, R. (2009). Princípios de Microbiologia (1 r). Educação Tata McGraw-Hill.