- Base
- Peptonas e extrato de levedura
- Glicose
- L-lisina
- Indicador de pH (roxo de bromocresol)
- Citrato férrico de amônio e tiossulfato de sódio
- Interpretação do teste
- Descarboxilação de lisina
- Desaminação de lisina
- Produção de sulfeto de hidrogênio (H
- Registro de resultados
- Preparação
- Formulários
- Referências
O ágar LIA (Lysine Iron) é um teste bioquímico usado para identificar bactérias da família Enterobacteriaceae. Este meio foi criado por Edwards e Fife, com base na fórmula de Falkow.
Originalmente, esse teste era um caldo contendo peptonas, extrato de levedura, glicose, L-lisina, roxo de bromocresol e água destilada. Edwards e Fife adicionaram ágar-ágar, citrato de amônio férrico e tiossulfato de sódio.
Teste positivo e negativo para descarboxilação da lisina. Fonte: Foto e diagrama propriedade do autor MSc. Marielsa gil
O teste consiste basicamente em demonstrar a presença da enzima lisina descarboxilase, capaz de reagir com o grupo carboxila do aminoácido L-lisina. A desaminação do aminoácido também pode ocorrer devido à presença da enzima lisina desaminase.
Além disso, a composição do meio mostra a capacidade de alguns gêneros bacterianos de produzir sulfeto de hidrogênio. Por fim, também é possível observar a geração ou não de gás no meio.
Base
Peptonas e extrato de levedura
Como a maioria dos meios de cultura, o Lysine Iron Agar contém componentes que fornecem a fonte de nutrientes necessários para o crescimento bacteriano. Esses componentes são representados por peptonas e extrato de levedura.
Glicose
Da mesma forma, este ágar contém glicose como um carboidrato fermentável. Todas as bactérias da família Enterobacteriaceae são conhecidas por fermentar glicose.
Essa etapa é fundamental, pois será responsável pela acidificação do meio, condição essencial para que a enzima lisina descarboxilase -se presente- atue sobre seu substrato.
Em alguns gêneros de bactérias, a produção de gás devido à fermentação da glicose pode ser observada.
O gás é evidenciado quando há deslocamento do ágar no tubo, deixando um espaço vazio no fundo do tubo, ou pela fratura do meio em duas ou mais porções.
L-lisina
Uma vez que a lisina é descarboxilada, uma diamina (cadaverina) e dióxido de carbono são formados.
A descarboxilação ocorre na presença do fosfato de coenzima piridoxal. Essa reação é irreversível.
Indicador de pH (roxo de bromocresol)
Todas as mudanças de pH que ocorrem no meio pelas várias reações são detectadas pelo indicador de pH roxo do bromocresol.
Nesse sentido, quando há acidificação o meio torna-se amarelo, e quando há alcalinização o meio retorna à cor roxa ou roxa original.
Quando ocorre a desaminação da lisina devido à presença da enzima lisina desaminase, uma cor avermelhada é formada na superfície, típica dos gêneros Proteus, Providencia e algumas espécies de Morganella.
Isso se deve ao fato de que durante o processo de desaminação se forma o ácido alfa-ceto-carbônico, que reage com o citrato de amônio na presença de oxigênio, o que provoca a referida cor.
Citrato férrico de amônio e tiossulfato de sódio
Por outro lado, as bactérias produtoras de sulfeto de hidrogênio serão evidenciadas pela presença de tiossulfato de sódio (fonte de enxofre) e citrato férrico de amônio, que é o desenvolvedor de H 2 S.
As bactérias que possuem a enzima tiossulfato redutase têm a capacidade de atuar reduzindo o tiossulfato de sódio presente, formando sulfito e sulfeto de hidrogênio (H 2 S).
Este último é um gás incolor, mas quando reage com o sal de ferro forma sulfeto metálico ferroso, que é um composto insolúvel (precipitado preto visível).
No entanto, a capacidade de formar H 2 S com este meio não é muito confiável, porque algumas bactérias lisina descarboxilase negativas capazes de produzir H 2 S não formarão o precipitado preto, pois a acidez do meio interfere. Portanto, é recomendável verificar com outros meios de comunicação que contenham ferro.
Interpretação do teste
Descarboxilação de lisina
Os tubos devem ser lidos após as 24 horas de incubação, caso contrário, existe o risco de interpretação errônea da reação, reportando falsos negativos.
Deve-se lembrar que a primeira reação que ocorrerá será a fermentação da glicose, pois todos os tubos após 10 a 12 horas ficarão amarelos.
Se ao final do tempo de incubação (24 horas) for observado um fundo amarelo com uma superfície roxa ou roxa, a reação é negativa. A cor roxa da superfície corresponde à alcalinização do meio pelo uso de peptonas.
Uma reação positiva é aquela em que o fundo e a superfície do tubo ficam totalmente roxos, ou seja, ele retorna à cor original.
Portanto, quem determina a positividade do teste é a base ou background do meio. Em caso de dúvida quanto à cor, pode ser comparado a um tubo LIA não inoculado.
Desaminação de lisina
Um tubo que mostra a desaminação da lisina terá uma superfície marrom avermelhada e um fundo amarelo (ácido), ou todo o tubo marrom avermelhado.
Esta reação é interpretada como negativa para descarboxilação da lisina, mas positiva para desaminação da lisina.
Esta reação é definida e interpretada na moldura.
Produção de sulfeto de hidrogênio (H
Uma reação positiva é observada pelo aparecimento de um precipitado preto em todo ou parte do meio. Normalmente entre a borda do chanfro e a base.
Se o precipitado ocorrer ao longo do tubo, ele não revelará as outras reações que ocorrem no meio.
Registro de resultados
Ao interpretar o teste, os resultados são registrados da seguinte forma:
Primeiro, o bisel é lido, depois a parte inferior ou bloco, a produção de H 2 S e, finalmente, a produção de gás.
Exemplo: K / A + (-). Isso significa:
- K: moldura alcalina (cor roxa)
- A: Fundo ácido (amarelo), ou seja, reação de descarboxilação negativa e desaminação negativa.
- +: Produção de sulfeto de hidrogênio
- (-): Sem gás.
Preparação
Pesar 35 g do meio de lisina ágar ferro desidratado e dissolvê-lo em um litro de água destilada.
Aquecer até que o ágar se dissolva completamente; para isso, deixe ferver por um minuto, mexendo sempre. Distribua 4 ml do meio em 13/100 tubos de ensaio com tampas de algodão.
Esterilize em autoclave a 121 ° C por 15 minutos. Retire da autoclave e deixe ficar em um ângulo de forma que haja uma base profunda e um bisel curto.
Armazenar em geladeira 2-8 ° C. Deixe aquecer antes de semear a cepa bacteriana.
A cor do meio desidratado é bege e o meio preparado é roxo avermelhado.
O pH final do meio preparado é 6,7 ± 0,2
O meio fica amarelo em pH 5,2 ou menos, e é roxo em pH 6,5 e acima.
Formulários
Este teste, juntamente com outros testes bioquímicos, é usado para a identificação de bacilos da família Enterobacteriaceae.
O meio é semeado com um laço reto ou agulha, um ou dois furos são feitos no fundo do tubo e então a superfície do meio é marcada em zigue-zague.
Incubar por 24 horas a 35-37 ° C em aerobiose. Se necessário, é deixado incubar por mais 24 horas.
É principalmente útil para diferenciar espécies de Citrobacter lactose-negativas de Salmonellas sp.
Fonte: Koneman E, Allen S, Janda W, Schreckenberger P, Winn W. (2004). Diagnóstico microbiológico. 5ª ed. Editorial Panamericana SA Argentina.
Referências
- Mac Faddin J. (2003). Testes bioquímicos para identificação de bactérias de importância clínica. 3ª ed. Editorial Panamericana. Bons ares. Argentina.
- Forbes B, Sahm D, Weissfeld A. (2009). Bailey & Scott Microbiological Diagnosis. 12 ed. Editorial Panamericana SA Argentina.
- Koneman E, Allen S, Janda W., Schreckenberger P, Winn W. (2004). Diagnóstico microbiológico. 5ª ed. Editorial Panamericana SA Argentina.
- Britannia Laboratories. Agar de ferro lisina. 2015. Disponível em: britanialab.com
- Laboratórios BD. BBL Lysine Iron Agar Slants. 2007. Disponível em: bd.com
- Valtek Laboratories. Médio LIA 2009. Disponível em: andinamedica.com